====== 漂白 ======

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工事中
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検体を漂白剤に浸漬してある程度透明化する処理。
黒く不透明な検体の場合に行う。
光学顕微鏡は透過照明なので不透明だと観察できない。
漂白剤には[[hydrogen_peroxide]](オキシドールで良い)に促進剤として10%[[ammonia_water]]を添加したものを使う。

===== 順番 =====

私は長い間、[[dewaxing]]の後で漂白処理を行ってきたが、
ワックスが少ない検体で試してみたところ[[dewaxing]]の前に行っても問題なさそうだった。
そうすると脱ロウ剤->水への置換処理が省けるので少し手間が減る。
ワックスが多い検体でもできるかどうかは未調査。
そして、まだ十分テストされていないが、[[maceration]]の前に行っても良さそうだった。
[[maceration]]の前に行うと、黒くて不透明な検体の[[maceration]]の終了判定がやりやすくなる。
しかし漂白終了の判断は難しい。

軟弱個体の場合は[[maceration]]の前に行う。
-> どこかにまとめる。

※多くの黒いコナジラミの蛹殻は覆面側が透明な場合が多いが、イヌツゲクビレコナジラミの用に両面とも黒い種もある。

===== 道具 =====

  * 容器は[[glass dishes]]でも[[plastic dishes]]でも良い。
  * [[microscooper]]や[[microbrush]]。気泡が発生し検体が浮いてくるので[[pipette]]は使いづらいと思う。気泡があるとチップの壁面にくっつきやすいし。
  * [[hydrogen_peroxide]]
  * [[ammonia_water]]

透明な容器でかつ加温する場合は[[anti-fogging]]処理を施すとフタをしたまま中が見れて便利(テスト中)。
またプラスチック容器の場合は[[plastic dishes#濡れ性の改善]]を行うと見やすくなるかもしれない(テスト中)。

===== 手順 =====

容器に検体と[[hydrogen peroxide]]と[[ammonia water]]を入れしてしばらく置く。
加温する場合はフタをする。
ときどき観察して、完了した個体から順番に[[microscooper]]等を使ってすくい上げる。

常温でも加温しても良い。

処理時間は設定温度60度に加温しておよそ30分〜2時間ぐらいか?
-> 種ごとに例を挙げる。

どれくらいの濃度に仕上げるか?
濃いと生物顕微鏡で見づらい。
ちょっと薄めな感じで良いと思う。
写真

[[maceration]]の前に行う場合、[[maceration]]でも漂白されるので、濃いめに引き上げる必要がある。


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===== 参考文献 =====
~~REFNOTES~~
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===== Backlinks =====
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===== TODO =====
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