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--- bleaching [2025/02/21 07:40] – Konajirami-ya
+++ bleaching [2026/03/15 19:49] (現在) – Konajirami-ya
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 <WRAP center round todo 60%>
-工事中
+  * 漂白を[[maceration]]の前に行う方向でテスト中。
+  * 漂白の停止に[[acetic acid]]と[[purified water]]を使う方法はまだテストしてない。
+  * 写真
 </WRAP>
-検体を漂白剤に浸漬してある程度透明化させる処理。
+検体を漂白剤に浸漬してある程度透明化する処理。
 黒く不透明な検体の場合に行う。
-光学顕微鏡は透過照明なので不透明だと観察できない。
 漂白剤には[[hydrogen_peroxide]](オキシドールで良い)に促進剤として10%[[ammonia_water]]を添加したものを使う。
 ===== 順番 =====
-私は長い間、[[dewaxing]]の後で漂白処理を行ってきたが処理が少し面倒になる。
+[[:dewaxing]]の後、[[:maceration]]の前に行う方向で現在テスト中。
-ワックスが少ない検体で試してみたところ[[dewaxing]]の前に行っても問題なさそうだった。
+[[:maceration]]の前に漂白しておいた方が､[[:maceration]]の終了判断が行いやすい。
-ワックスが多い検体でどうなるかは未調査。
-[[maceration]]の前に行うことも可能だが終了の判断が難しい。
-前に行いたいと思うのは、イヌツゲクビレコナジラミのように背面も覆面も黒く[[maceration]]の終了の判断がつきにくいとき。
-アオキコナジラミは覆面側が透明なので良いのだが。
-軟弱個体の場合は[[maceration]]の前に行う。
 ===== 道具 =====
-  * 容器は[[glass dishes]]でも[[plastic dishes]]でも良い。
+  * 容器は[[glass dishes]]でも[[plastic dishes]]でも良い。2つ用意する。
-  * [[microscooper]]や[[microbrush]]。気泡が発生し検体が浮いてくるので、[[pipette]]は使えない。
+  * だいたい気泡が発生して浮いてくるので掬うには[[inoculation loop]]が使いやすい。
   * [[hydrogen_peroxide]]
   * [[ammonia_water]]
+  * [[acetic acid]]
-透明な容器でかつ加温する場合は[[anti-fogging]]処理を施すとフタをしたまま中が見れて便利。
+  * [[purified water]]
-またプラスチック容器の場合は[[plastic dishes#濡れ性の改善]]を行うと見やすくなる。
 ===== 手順 =====
-容器に検体と漂白剤を入れフタをしてしばらく置く。
+[[:dewaxing]]の後、[[:ethanol]]や[[:ipa]]ですすぐ。
-ときどき観察して、完了した個体から順番にすくい上げる。
+容器Aに検体と[[hydrogen peroxide]]と[[ammonia water]]を入れしてしばらく置く。
+加温する場合はフタをする。
+容器Bには[[:acetic acid]]と[[:purified water]]を適当に混合したものを用意しておく。
+実体顕微鏡を使い透過照明で観察して、完了した個体から順番に[[inoculation loop]]等を使ってすくい上げ容器Bに落とす。
+常温でもできるが加温すると早くできる。
+処理時間は設定温度60度で加温しておよそ数分〜2時間ぐらいか?
+-> 種ごとに例を挙げる。
-どれくらいの濃度に仕上げるか?　写真
+どれくらいの濃度に仕上げるか?
+この後の[[:maceration]]でも漂白されるので､少し透けてきた状態で終了する。
+特に､丸まってしまう検体の場合、丸まりそうになったらどんどん掬う。
+やり過ぎると後戻りできないので十分注意すること。
-処理時間はおよそ30分〜2時間ぐらいか?
+写真
-再調査。
-常温でも加温しても良い。