bleaching
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| 行 2: | 行 2: | ||
| <WRAP center round todo 60%> | <WRAP center round todo 60%> | ||
| - | 工事中 | + | * 漂白を[[maceration]]の前に行う方向でテスト中。 |
| + | * 漂白の停止に[[acetic acid]]と[[purified water]]を使う方法はまだテストしてない。 | ||
| + | * 写真 | ||
| </ | </ | ||
| 検体を漂白剤に浸漬してある程度透明化する処理。 | 検体を漂白剤に浸漬してある程度透明化する処理。 | ||
| 黒く不透明な検体の場合に行う。 | 黒く不透明な検体の場合に行う。 | ||
| - | 光学顕微鏡は透過照明なので不透明だと観察できない。 | ||
| 漂白剤には[[hydrogen_peroxide]](オキシドールで良い)に促進剤として10%[[ammonia_water]]を添加したものを使う。 | 漂白剤には[[hydrogen_peroxide]](オキシドールで良い)に促進剤として10%[[ammonia_water]]を添加したものを使う。 | ||
| ===== 順番 ===== | ===== 順番 ===== | ||
| - | 私は長い間、[[dewaxing]]の後で漂白処理を行ってきたが、 | + | [[:dewaxing]]の後、[[:maceration]]の前に行う方向で現在テスト中。 |
| - | ワックスが少ない検体で試してみたところ[[dewaxing]]の前に行っても問題なさそうだった。 | + | [[:maceration]]の前に漂白しておいた方が、[[:maceration]]の終了判断が行いやすい。 |
| - | そうすると脱ロウ剤-> | + | |
| - | ワックスが多い検体でもできるかどうかは未調査。 | + | |
| - | そして、まだ十分テストされていないが、[[maceration]]の前に行っても良さそうだった。 | + | |
| - | [[maceration]]の前に行うと、黒くて不透明な検体の[[maceration]]の終了判定がやりやすくなる。 | + | |
| - | しかし漂白終了の判断は難しい。 | + | |
| - | 軟弱個体の場合は[[maceration]]の前に行う。 | ||
| - | -> どこかにまとめる。 | ||
| - | |||
| - | ※多くの黒いコナジラミの蛹殻は覆面側が透明な場合が多いが、イヌツゲクビレコナジラミの用に両面とも黒い種もある。 | ||
| ===== 道具 ===== | ===== 道具 ===== | ||
| - | * 容器は[[glass dishes]]でも[[plastic dishes]]でも良い。 | + | * 容器は[[glass dishes]]でも[[plastic dishes]]でも良い。2つ用意する。 |
| - | * [[microscooper]]や[[microbrush]]。気泡が発生し検体が浮いてくるので[[pipette]]は使いづらいと思う。気泡があるとチップの壁面にくっつきやすいし。 | + | * だいたい気泡が発生して浮いてくるので掬うには[[inoculation loop]]が使いやすい。 |
| * [[hydrogen_peroxide]] | * [[hydrogen_peroxide]] | ||
| * [[ammonia_water]] | * [[ammonia_water]] | ||
| - | + | * [[acetic acid]] | |
| - | 透明な容器でかつ加温する場合は[[anti-fogging]]処理を施すとフタをしたまま中が見れて便利(テスト中)。 | + | |
| - | またプラスチック容器の場合は[[plastic dishes# | + | |
| ===== 手順 ===== | ===== 手順 ===== | ||
| - | 容器に検体と[[hydrogen peroxide]]と[[ammonia water]]を入れしてしばらく置く。 | + | [[: |
| + | 容器Aに検体と[[hydrogen peroxide]]と[[ammonia water]]を入れしてしばらく置く。 | ||
| 加温する場合はフタをする。 | 加温する場合はフタをする。 | ||
| - | ときどき観察して、完了した個体から順番に[[microscooper]]等を使ってすくい上げる。 | + | 容器Bには[[: |
| + | 実体顕微鏡を使い透過照明で観察して、完了した個体から順番に[[inoculation loop]]等を使ってすくい上げ容器Bに落とす。 | ||
| - | 常温でも加温しても良い。 | + | 常温でもできるが加温すると早くできる。 |
| - | + | 処理時間は設定温度60度で加温しておよそ数分〜2時間ぐらいか? | |
| - | 処理時間は設定温度60度に加温しておよそ30分〜2時間ぐらいか? | + | |
| -> 種ごとに例を挙げる。 | -> 種ごとに例を挙げる。 | ||
| どれくらいの濃度に仕上げるか? | どれくらいの濃度に仕上げるか? | ||
| - | 濃いと生物顕微鏡で見づらい。 | + | この後の[[: |
| - | ちょっと薄めな感じで良いと思う。 | + | 特に、丸まってしまう検体の場合、丸まりそうになったらどんどん掬う。 |
| + | やり過ぎると後戻りできないので十分注意すること。 | ||
| 写真 | 写真 | ||
| - | [[maceration]]の前に行う場合、[[maceration]]でも漂白されるので、濃いめに引き上げる必要がある。 | ||
bleaching.1740102569.txt.gz · 最終更新: 2025/02/21 10:49 by Konajirami-ya
