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staining:acid_fuchsin

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staining:acid_fuchsin [2025/03/08 11:42] Konajirami-yastaining:acid_fuchsin [2026/04/18 13:19] (現在) Konajirami-ya
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 ====== 染色(酸性フクシン) ====== ====== 染色(酸性フクシン) ======
 +
  
 <WRAP center round todo 60%> <WRAP center round todo 60%>
-工事+開発。 
 </WRAP> </WRAP>
  
-白い検体(処理すると透明になる)の場合に行う。 +白い検体(処理すると透明になる)の場合に染色を行う。 
-位相差顕微鏡で観察する場合はやらなくても良いと書かれている文献もある[(schauff2001>>page:41)]、 +[[:acid fuchsin]]による染色はアブラムシ、カイガラムシ、コナジラミ等を 
-透明だと顕微鏡での導入に苦労するので多少はやった方が良いと思われる。 +[[:canada balsam]]で封入する場合の代表的な方法。 
-基本透明で一部に斑紋がある場合はどうして良いのかわからないがとりあえず少しやることにするか?  + 
-[[:acid fuchsin]]に色はアブラムシ、カイガラムシ、コナジラミ等で標準的に使用されてる。+文献に載っている方法とは若干違うが、私が行っている方法を紹介する。 
 +簡単に言うと、 
 +溶媒は[[:gaa]]で、染色液は極めて薄いものを使い(0.001%)、 
 +加温して長時間(8時間以上)掛けて処理する。 
 +そのため容器は漏れの少ない[[:soaking tube]]を使用する。 
 + 
 +<WRAP hide> 
 +<nowiki> 
 +->  
 +これは[[:staining]]に書くべきか。 
 +斑紋が重要な場合、 
 +位相差顕微鏡で観察する場合はやらなくても良いと書かれている文献もある[(schauff2001>>page:41)]。 
 +基本透明で一部に斑紋がある場合はどうして良いのかわからないがとりあえず少しやることにするか?  
 +</nowiki> 
 +</WRAP> 
 + 
 + 
 +===== 用具 ===== 
 + 
 +<WRAP tdl right 40%>{{:no_image.webp?400x300|}} 
 +道具一式の集合写真 
 +</WRAP> 
 +  * 1.5〜5mLくらいの[[:soaking tube]] 
 +  * [[:gaa]] 
 +  * [[:acid fuchsin]] 0.01と0.001% 染色液。数が多い場合は0.01%を使う。 
 +  * 細口[[:pipette]] 
 +  * [[:hot plate]] 
 +  * [[:microtube holder]] ホットプレート収められ小型のもの。 
 +  * 吸着剤(下記)。濃くなりすぎた時に脱するのに使う。 
 +  * [[:tweezers]] 吸着剤を扱うときに使う 
 +<WRAP clear/> 
 + 
 +<WRAP tdl right 40%>{{:staining:staining-02.jpg?400x300|}} 
 +濃くなり過ぎたときに使う吸着剤。鶏卵の卵殻膜を小さく切ったもの。  
 +</WRAP> 
 +吸着剤鶏卵の卵殻膜をあらかじめ以下のように調整しておく。 
 +  - ゆで卵を作ったときに卵殻膜(薄皮)を取り出す。 
 +  - 取り出した卵殻膜を10%ぐらいの[[:acetic acid]]に1日ぐらい浸けて卵殻の成分(炭酸ウム)を溶かす。 
 +  - 水洗乾燥する 
 +  - 小く切ってケースに入れておく。長期間保存できる。 
 +<WRAP clear/> 
  
 ===== 手順 ===== ===== 手順 =====
  
-一般的に行なわれている方法と少し違うが、 +前工程[[:dewaxing]]で[[:soaking tube]]入っているとる。
-私は以下のよう処理している。 +
-コナジラミが種類によって染まりにくいいうのがあかもしれない+
  
 +複数個体まとめて処理する場合は同種の大きさの揃ったものをまとめること
 +(個別に掬うことはしないので)。
  
-[[:dewaxing]][[:acidification]]後に行う。+(1) 前工程で使用した脱ロウ剤を細口[[:pipette]]を使って慎重に[[:decantation]]する(検体を吸い込んだり潰したりしないよに)
  
-加温る場合ねじ込み式のフタ等の漏れの少ない容器使う([[:polypropylene]]の[[:plastic dishes]]等)+<WRAP tdl right 40%>{{:staining:staining-01.jpg?400x300|}} 
 +</WRAP> 
 +(2) 次に(すぐ必要はない)、[[:gaa]]0.2〜0.5mLくらい加える。 
 +[[:gaa]]の量はそれほど多くなくて良い。 
 +多いとチューブ越しに[[:stereo microscope]]で観察しづらくなる
  
-同じような大きさの検体をまめて処理する。+らに、[[:acid fuchsin]]染色液を加えフタをしっかり閉める。 
 +染色液量は0.001%のものを検体の数の1/2から同程度の滴数(検体が6個の場合3〜6滴)とする。 
 +検体の数が多い場合は0.01%を使う。 
 +かなり薄いように見えるがこれで良い。 
 +1滴の量!!
  
-排液[[:acetic acid]]を 0.5〜1mLぐらい?を加える。 +<WRAP clear/> 
-何かですぐ必要はない+<WRAP tdl right 40%>{{:preparation:dewaxing-3.jpg?400x300|}}</WRAP> 
 +(3) マイクロチューブをホルダーに固定し[[:hot plate]]に入れて60℃設定で8時間ほど静置する。 
 +ときどき観察 
 +<WRAP clear/>
  
-0.01%[[:acid fuchsin]]染色液1滴加え +<WRAP tdl right 40%>{{:bottles:microtube_holder-06.png?400x300|}}</WRAP> 
-フタする。 +[[:stereo microscope]]で状態場合は図のように、 
-加温しながら数時間様子を+マイクロチューブ斜めに保持て水平液面の下に検体来るようにするといくやすい 
 +(液体の量が多いとこれができない) 
 +<WRAP clear/>
  
-<wrap em>氷酢酸可燃性なので火気静電気等に注意すこと。 +<WRAP tdl right 40%>{{:no image.webp?400x300|}}</WRAP> 
-また刺激臭がかなり強い。</wrap>+【薄い場合】 
 +8時間ぐらいおいても薄い場合は、0.001%[[:acid fuchsin]]を追加して様子を見る。 
 +<WRAP clear/>
  
-斑に染まてくが全体を平均すれば良いとい状態で +<WRAP tdl right 40%>{{:no image.webp?400x300|}}</WRAP> 
-[[:decantation]]し、新しい[[:acetic acid]]に入れ替える。 +斑にた場合】  
-加温しながら8時間ぐらいすると斑が消えて平均的に染まる+途中で斑になことも多く、その場合は平均すると良い染まり具合にりそと思った時点 
 +薬液を[[:gaa]]に置き換、そのまま加温を続ける。 
 +8時間ぐらい置 
 +<WRAP clear/>
  
-常温でもできと思うが時間は調べわかない。 +<WRAP tdl right 40%>{{:staining:staining-05.jpg?400x300|}} 
-ごい時間掛かりそう+濃すぎ。 
 +</WRAP> 
 +【濃くりすぎてしまった場合】 
 +途中で濃くなり過ぎた思った 
 +薬液をただの[[:gaa]]に置き換え、 
 +吸着剤(卵殻膜)を何枚か投入し加温して静置る。 
 +かなり時間掛かるが色素が吸着剤に移る 
 +濃すぎると[[:biological microscope]]で観察したときにコントラストが低くく見づらい。 
 +<WRAP clear/>
  
-れぐらいの濃度で仕上げるか。 +<WRAP tdl right 40%>{{:staining:staining-07.jpg?400x300|}} 
-濃いとすごく見くいので、薄めが良いと思う+れぐらい。 
 +</WRAP> 
 +【ええ感じそまったら】終了 
 +<WRAP clear/>
  
  
-===== 濃くなりすぎた場合 =====+===== 注意点 =====
  
-70%エタノール浸けると薄くなるという記述も見られるがうく行かない。+  * [[:gaa]]は可燃性なので扱いは注意す。 
 +  * フタを開けるときは少し冷してらの方が良い。 
 +  * 次の[[:clearing]]に時間を掛けないこと5分程度行った後、すぐにマウントする。 -> クローブオイルの品質の問題もあるか?
  
-氷酢酸中に検体と一緒に卵の薄皮を入れて色素を吸着させるという方法を試している。 
-実験中。 
  
  
 +===== 課題 =====
 +
 +  * 脱ロウと同時にできない?
 +  * なにかバッファ的なものを入れて染色液の量を一定にさせることができないか? 決まった大きさの卵殻膜を一緒に入れて一定量の染色液を使うとか。
 +  * 容器はガラス製の短い[[:test tube]]の方が良い気がするけど、わざわざ入手する必要もないか。
 +  * 小さい刺毛がとても見づらいのでこれだけを染める[[:finishing staining]]というのは可能だろうか。
 +
 +===== 関連事項 =====
 +
 +  * [[staining:study]]
 +
 +<WRAP hide><nowiki>
 ===== 参考文献 ===== ===== 参考文献 =====
 +</nowiki></WRAP>
 ~~REFNOTES~~ ~~REFNOTES~~
- 
-<WRAP small> 
-[[:refnotes:schauff2001]] 
-</WRAP> 
  
 ===== Backlinks ===== ===== Backlinks =====
staining/acid_fuchsin.1741401755.txt.gz · 最終更新: 2025/03/08 11:42 by Konajirami-ya