マウントを行う前に検体を確認したい場合がある。 特にコナジラミの蛹殻の場合、 通常背面を上にするのだけど実体顕微鏡では背面がどっちかよくわからない場合があったり、 中が奇麗に処理されているか良く分からなかったりする。 そのため簡易的に生物顕微鏡で見る方法があるとよい。 カバーガラスを掛けてしまうと刺毛が取れたりするので､潰さないようにして観察できると良い。

倒立顕微鏡の方が楽にできそうな気もするが､ ここでは一般的な正立顕微鏡を対象とする。

フタ付きチャンバー法のツールを 透明化用の処理容器として使うのもアリかなぁと思う。

簡易的にはスライドガラスに検体を置きクローブオイルを少し盛った状態にし、 そのまま生物顕微鏡で低倍率で見るという方法。 光学的にはかなりいかさまだけど実体顕微鏡よりはずっと良く見える。 問題点としてはクローブオイルは揮発成分が含まれており対物レンズに付くと思われるので定期的な掃除が必要になると思う。 掃除しないで放置しておくとどうなるかはわからない。

※ 適当に命名した。バンク法の方がいいか?

ワッシャーをスライドガラスに接着する。 内側に検体を入れてクローブオイルを水平になるように盛る。 このまま生物顕微鏡を用い低NAで観察する。 簡易的な方法に比べてクローブオイル面が水平に近くなる。 揮発成分が対物レンズに付着する問題は残る。

ワッシャーにはPTFE製を使う(液が流れにくい)。 大きさは適当で良いが､私がとりあえず作ったのは内径5mm、外径10mm、厚さは0.2mmと0.3mm。 接着剤にはUVレジンを使用。 PTFEは超難接着材料だしUVレジンは接着力がほとんど無いが、力が掛からないせいかとりあえずくっついてる。 UVレジンはクローブオイルや酢酸に対してあまり耐性が無いので(一般的な接着剤の中では耐性がある方だが)、 長時間の使用は避けた方が良く､使用後は洗浄しておいた方が良いと思う。

※とりあえず適当に命名した。

チャンバー法と同じ道具を使い､上からカバーガラスを掛ける。 ワッシャーがスペーサーとなり検体が潰れない。 光学的にも比較的問題が少なく揺れも少ないように思う。

作り方はチャンバー法と同じ。

※とりあえず適当に命名した。

チャンバー法にフタを掛けたもの。 フタは厚めのワッシャーとカバーガラスで作る。 クローブオイルの揮発成分が対物レンズに付くことは無いが､スライドガラスを曇らせるかもしれない。 扱いは比較的楽。 光学的にはあまり良くないが実体顕微鏡で見るよりは遥かに見やすい。

フタの作り方。 フタに使うワッシャーは内径がワッシャーAの外径より少し大きめのもので、 少し厚めのものを使う。　 材質はPOM製を使った。 POMは耐薬品性に優れており、プラスチックワッシャーとしては一般的でサイズが豊富。 こちらも難接着材料。 大きさは内径10.5mm、外径22mm、厚さ0.5mm(もう少し厚いのにすればよかった)。 接着剤は同じくUVレジンを使用した。 いちおうくっついてるがどれくらい持つだろうか。

※とりあえず適当に命名した。

チャンバー法とは異なりワッシャーAとBともにカバーガラス側に接着されている。 ワッシャーAはPTFE製を使用すべき。 検体をチャンバーに入れクローブオイルで満たした後、ひっくり返してスライドガラスに載せ生物顕微鏡で観察する。 光学的にチャンバー法よりまともで揮発成分の影響を受けないので長時間観察できるが、 ひっくり返す作業が発生するので､神経を使う。 素材とかはチャンバー法と同じだが､ワッシャーBはもう少し厚いものにした方が良かったかも。 ちょっと使うのが面倒くさいかなぁ。