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染色(酸性フクシン)
開発中。
マイクロチューブもしくは短い試験管を使うことにした。
白い検体(処理すると透明になる)の場合に染色を行う。 酸性フクシンによる染色はアブラムシ、カイガラムシ、コナジラミ等を カナダバルサムで封入する場合の代表的な方法。 文献に載っている方法ではどうもうまく行かないので、 私が行っている方法を紹介する。 簡単に言うと、 極めて薄い染色液で加温し長時間掛けて処理する。 そのため容器は漏れの少ないマイクロチューブを使用する。
→ これは染色に書くべきか。 斑紋が重要な場合、 位相差顕微鏡で観察する場合はやらなくても良いと書かれている文献もある(Michael E. Schauff, 2001, p.41)。 基本透明で一部に斑紋がある場合はどうして良いのかわからないがとりあえず少しやることにするかな?
用具
手順
前工程は酸性化かdefattingで、 浅い容器に入っているとする。
まとめて処理し個別に掬うことはしないので、 複数個体をまとめて処理する場合は同種の同じような大きさものをまとめること。
(1) 前工程で使用した薬液を細口ピペットを使って排液し
(2) 氷酢酸を0.2〜0.5mLくらい加える。
(3) 太口ピペットを使い検体を氷酢酸ごとマイクロチューブに移動し、 チューブの外から観察できるように氷酢酸の量を調節する。
(4) 0.001%染色液を検体の数の1/2から同程度の滴数(検体が6個の場合3〜6滴)加えフタをしっかり絞める。 1滴の量…
(5) マイクロチューブをホルダーに固定し60℃設定のホットプレートでとりあえず8時間静置する。 途中、ときどき観察する。 観察する場合はチューブを振って液滴を除いて中が見えるようにし､斜めに保持してチューブ越しに実体顕微鏡で観察する。 だいたい周辺部から染まってくるので平均したら良い具合になりそうと思ったら、 薬液を氷酢酸に置き換え、そのまま加温を続ける。 薄いと思ったら0.001%酸性フクシンを追加する。 濃すぎてしまった場合は卵殻を加えて加温して静置する。
(6) 均一に染まっていない場合はさらに8時間ほど加温する。
(7) ええ感じに染まったら薬液を氷酢酸に置き換え静置する。
注意点
備考
一般的に行なわれている方法とは少し違うが、私は以下のように処理している。 文献に載っている方法だとどうもうまく行かない。 → アルカリがなかなか落ちないのかもしれない。 コナジラミが種類によって染まりにくいということかもしれない。
脱ロウと酸性化後に行う。 酸性化を完全に行うために、 ごく少量の酸性フクシンを入れておくと判断しやすいかもしれない。 → これは独立に行う。
染色開始
同じような大きさの検体をまとめて処理する。
️排液し、氷酢酸を 0.5〜1mLぐらい加える。 何かですすぐ必要はない。
0.001%酸性フクシン染色液を1〜数滴加える。 検体の大きさや個数による。 個体の数だけの
フタをする。 加温しながら様子を見る(〜1時間?)。
氷酢酸は可燃性なので火気、静電気等に注意すること。 また刺激臭がかなり強い。
斑に染まってくるが全体を平均すれば良いかなという状態で終了する。
均し
️排液し、新しい氷酢酸に入れ替える。 加温しながら8時間ぐらい放置すると斑が消えて平均的に染まる(均し)。 均しは時間が掛かる。
脱色は少し時間が掛かるので、 染色を早めに切り上げて均しに移行し、 薄かったら再度染色というのを繰り返すと良いかもしれない。
常温でもできると思うが時間は調べないとわからない。 すごい時間掛かりそう。
どれぐらいの濃度で仕上げるか。 濃いとすごく見にくいので、薄めが良いと思う。 写真!!
脱色方法
濃くなりすぎた場合、 氷酢酸中に検体と一緒にシリカゲルを数粒入れて色素を吸着させるという方法を試している。 実験中。
参考文献
Schauff, M. E. (2001) Collecting and preserving insects and mites
Backlinks
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